Trichoderma is a genus of filamentous fungi that is commonly used in experimental processes due to its various beneficial properties. These fungi are ubiquitous in nature and can be found in soil, decaying wood, and other organic matter. Trichoderma species have been extensively studied for their ability to act as biological control agents, biofertilizers, and as producers of secondary metabolites with potential industrial and agricultural applications. In this article, we will explore the experimental process involving Trichoderma and discuss its applications in different fields.

Isolation and identification: The first step in working with Trichoderma involves isolating and identifying the desired strain. Trichoderma species can be isolated from soil, plant surfaces, or decaying organic matter. Samples are collected, and dilutions are prepared to obtain individual colonies. These colonies are then transferred to a selective medium that promotes the growth of Trichoderma. After isolation, the colonies are subjected to morphological and molecular identification techniques to determine the exact species and strain of Trichoderma.
Maintenance and culture preparation: Once the desired strain is identified, it needs to be maintained and propagated for further experiments. Trichoderma can be stored as spores or mycelial fragments in various preservation methods, such as cryopreservation or lyophilization. For routine culture maintenance, the fungi are grown on suitable media, such as potato dextrose agar (PDA) or malt extract agar (MEA), under controlled laboratory conditions. The cultures are regularly sub-cultured to maintain their viability and purity.
Inoculum production: Before conducting experiments, a sufficient amount of Trichoderma inoculum needs to be prepared. Inoculum can be produced through submerged fermentation or solid-state fermentation methods. In submerged fermentation, Trichoderma is grown in liquid culture media in bioreactors or shake flasks, providing optimal conditions for growth. Solid-state fermentation involves growing Trichoderma on solid substrates, such as wheat bran or rice husks, under controlled conditions of temperature and humidity. The harvested biomass is then used as inoculum for subsequent experiments.
Application as a biocontrol agent: One of the significant applications of Trichoderma is its use as a biocontrol agent against plant pathogens. Trichoderma species are known for their antagonistic activity against various plant pathogens, including fungi, bacteria, and nematodes. In experimental setups, Trichoderma can be tested for its biocontrol efficacy in vitro and in vivo. In vitro assays involve dual culture techniques, where the pathogen and Trichoderma are grown together on a solid medium, and the inhibition of pathogen growth is observed. In vivo assays involve the application of Trichoderma to seeds, roots, or foliage of plants and evaluating its ability to suppress disease development.
Biofertilizer and plant growth promotion studies: Trichoderma species are also known for their ability to promote plant growth and enhance nutrient uptake. In experimental studies, Trichoderma can be tested for its biofertilizer potential by inoculating it into the soil or by applying it as a seed or foliar treatment. The growth parameters of the treated plants, such as shoot length, root length, biomass, and nutrient content, are measured and compared with untreated control plants. Various techniques, including molecular markers and isotopic labeling, can be used to track the movement and colonization of Trichoderma in the plant system.
Production of secondary metabolites: Trichoderma species are prolific producers of secondary metabolites, including enzymes, antibiotics, and other bioactive compounds. Experimental processes involving Trichoderma can focus on optimizing the production of these metabolites. This can be achieved by manipulating various culture parameters such as carbon and nitrogen sources, pH, temperature, and aeration. The fermented broth or the mycelial biomass of Trichoderma can be extracted, and the secondary metabolites can be purified and characterized using techniques like chromatography, spectroscopy, and bioassays.
Genetic manipulation: Advances in genetic engineering have enabled the manipulation of Trichoderma species for enhanced biocontrol activity, increased production of secondary metabolites, or improved tolerance to abiotic stresses. Genetic transformation techniques, such as Agrobacterium-mediated transformation or protoplast transformation, can be employed to introduce foreign genes or modify the expression of endogenous genes in Trichoderma. The transformed strains can then be evaluated for the desired traits through various experimental assays.
Interactions with other microorganisms: Trichoderma species interact with a wide range of microorganisms in their natural environment. Experimental studies can focus on understanding these interactions and their potential applications. For example, the synergistic interactions between Trichoderma and mycorrhizal fungi or rhizobia can be investigated for their combined effect on plant growth promotion. The antagonistic or synergistic interactions between Trichoderma and other biocontrol agents can also be explored to develop novel biocontrol strategies.
Field trials and commercialization: Once the experimental studies with Trichoderma show promising results, field trials are conducted to validate its efficacy under natural conditions. Field trials involve the application of Trichoderma in agricultural fields or other relevant ecosystems, and the impact on plant health, disease control, and crop yield is monitored. If the results are successful, the Trichoderma-based products can be commercialized for agricultural, horticultural, or environmental applications.
In conclusion, Trichoderma is a versatile organism that offers numerous experimental possibilities. Its applications range from biocontrol of plant pathogens to plant growth promotion and the production of bioactive compounds. The experimental process involving Trichoderma includes isolation and identification, maintenance and culture preparation, inoculum production, biocontrol studies, biofertilizer and plant growth promotion studies, secondary metabolite production, genetic manipulation, interactions with other microorganisms, and field trials. These experimental studies contribute to expanding our knowledge of Trichoderma and its potential applications in various fields.

트리코데르마(Trichoderma)는 토양, 식물 뿌리, 썩은 잎, 몸통 등 다양한 자연 환경에서 발견되는 곰팡이류 계통의 진균(fungus)입니다. 트리코데르마 종류는 많지만 대부분은 대기 중에 널리 분포하며 토양과 식물 주변에서 풍부하게 발생합니다. 이러한 종들은 식물 생장에 긍정적인 영향을 주고, 생물적 방제나 생물학적 퇴치제로 사용되기도 합니다.

트리코데르마는 다양한 생태학적 역할을 수행하며 여러 가지 유익한 기능을 갖고 있습니다. 이들은 다른 균류나 식물과의 경쟁에서 우위를 점하며, 토양 중 유기물 분해, 생분해 및 퇴적에 관여합니다. 또한, 트리코데르마는 식물의 뿌리를 침투하여 상호 작용을 통해 식물의 영양 흡수를 촉진하고, 식물의 면역 체계를 강화하여 병원균 감염을 예방하는 역할을 합니다. 아래에서 트리코데르마의 주요 기능과 활용에 대해 자세히 알아보겠습니다.

1. 생물학적 방제: 트리코데르마 종은 다른 병원균과 경쟁하여 식물에 대한 병원균 감염을 예방하거나 억제합니다. 이들은 병원균의 성장을 억제하는 효소와 항생물질을 분비하며, 식물 표면에 형성되는 밀폐된 막을 통해 병원균의 침투를 방지합니다. 이러한 특성으로 인해 트리코데르마는 생물학적 방제제로 널리 사용됩니다.

2. 생분해와 유기물 분해: 트리코데르마는 토양에서 유기물 분해와 생분해에 중요한 역할을 합니다. 이들은 다양한 종류의 섬유소 분해 효소를 분비하여 식물 잔사물, 몸통, 잎사귀 등의 유기물을 분해합니다. 이로써 유기물은 토양에 쉽게 흡수되어 영양소로 전환되며, 생태계의 영양 순환에 기여합니다.

3. 식물 성장 촉진: 트리코데르마는 식물의 뿌리와 밀접한 상호 작용을 합니다. 이들은 식물의 뿌리 주변에 형성되는 밀집체인 마이셀리움을 통해 식물과의 상호작용을 강화합니다. 마이셀리움은 식물의 뿌리 표면에 붙어서 영양 공급을 도와주고, 식물이 얻을 수 있는 물과 영양소의 흡수를 촉진합니다. 또한, 트리코데르마는 생장 스토리(Growth Promoting Substance)라고 알려진 성장 촉진 물질을 분비하여 식물의 성장을 촉진합니다.

4. 병원균 및 해충 퇴치: 트리코데르마는 병원균의 성장을 억제하는데 도움을 주는데, 이를 통해 식물의 병원균 감염을 예방하거나 제어하는 데 사용될 수 있습니다. 또한, 트리코데르마는 몇 가지 해충을 퇴치하는 데 도움이 되는 생물적 방제제로도 사용됩니다.


5. 토양 건강 촉진: 트리코데르마는 토양의 생물 다양성과 건강을 촉진하는 데 기여합니다. 이들은 다른 균류와의 경쟁을 통해 토양 생태계의 균형을 유지하고, 토양 구조를 개선하며, 토양의 유기물 함량을 증가시킵니다. 이는 토양의 비옥성을 향상시키고, 식물 생장을 지원하는데 도움을 줍니다.

요약하면, 트리코데르마는 생물학적 방제, 생분해 및 유기물 분해, 식물 성장 촉진, 병원균 및 해충 퇴치, 그리고 토양 건강 촉진 등 다양한 기능을 수행합니다. 이들은 농업, 원예, 환경 보전 등 다양한 분야에서 유익하게 활용되며, 생물학적 방제제나 생물학적 퇴치제로 널리 사용되고 있습니다.

 


심혈관 질환(CVD)은 인간에 비해 기대 수명을 감소시키며 세계인의 건강을 위협하고 있습니다. 혈전증은 CVD의 주요 원인 중 하나이며 피브린 응고 형성을 그 특징으로 합니다. 최근 미생물 혈전용해효소는 그 특이적인 특징으로 인해 기존의 혈전용해제보다 혈전증 치료에 많은 관심을 받고 있습니다. 박테리아 및 미세조류를 포함한 해양 미생물은 약리학적 특성이 개선되고 부작용이 적은 혈전용해 효소를 생산할 수 있는 상당한 능력을 가지고 있으므로 이러한 효소의 대규모 생산을 위한 유망한 후보로 간주됩니다. 해양 진균 유래 효소의 섬유소 분해 가능성을 평가한 연구는 없습니다. 현재 리뷰는 지금까지 확인된 해양 미생물로부터의 섬유소 분해 생체 촉매의 분리 소스, 생산, 특징 및 혈전 용해 가능성에 관한 개요를 제시합니다.

1. 서론

혈전증은 급성 심근 경색, 허혈성 심장 질환, 판막 심장 질환, 말초 혈관 질환, 부정맥, 고혈압 및 뇌졸중을 포함한 심혈관 질환(CVD)의 주요 원인이며 전 세계적으로 주요 사망 원인입니다. 인구 증가, 고령화 및 생활 방식의 변화로 인해 혈전성 질환이 더욱 심각한 문제가 되었습니다. 트롬빈은 피브리노겐을 혈전이나 혈전의 핵심 구성 요소인 피브린으로 전환하는 것을 촉매합니다. CVD의 공중 보건 데이터는 세계 보건 기구(WHO)에 의해 잘 문서화되어 있습니다. WHO의 경우 2016년에만 CVD로 인해 전 세계적으로 1,790만 명이 사망했으며, 2030년에는 약 2,330만 명이 영향을 받을 것으로 예측됩니다. 따라서 CVD는 경제적 부담뿐만 아니라 세계적인 건강 문제로 대두되고 있습니다. 혈전증은 CVD의 가장 중요한 원인 중 하나로 알려져 있으며 피브린 응고의 형성을 특징으로 합니다. 정상적인 생리적 조건에서는 피브린의 형성과 분해에 항상성 균형이 있습니다. 그러나 일부 병리학 적 장애에서는 균형이 맞지 않아 섬유소가 응집되어 혈전증이 발생합니다. 혈전의 빠른 용해와 혈류의 재확립은 혈전성 질환을 효과적으로 치료하는 데 중요합니다.섬유소용해 효소는 혈전증의 임상 치료를 위한 가장 유망한 약물로 간주됩니다. 이들은 플라스미노겐 활성화제(예: 조직형 플라스미노겐 활성화제 t-PA, 유로키나제 플라스미노겐 활성화제 u-PA, 스트렙토키나제 및 플라스민 유사(예: 나토키나제) 및 룸브로키나제 섬유소분해 효소)로서의 기능에 따라 그룹화할 수 있습니다.플라스미노겐 활성화제는 플라스민 생산에 의해 피브린을 가수분해하며, 후자는 피브린 혈전을 직접 분해할 수 있습니다. 현재까지 재조합 조직형 플라스미노겐 활성제(rt-PA)는 FDA 승인을 받은 유일한 상업용 혈전용해제입니다. 그러나 임상 데이터에 따르면 잠재적인 신경 독성과 함께 짧은 시간 창(time window)이 나타났으며 출혈로 인해 짧은 반감기와 더불어 t-PA 치료 실패 가능성이 발생했습니다. 예를 들어, 높은 비용과 바람직하지 않은 부작용으로 인해 연구자들은 비용 효율적이고 안전한 혈전용해제를 탐색하게 되었습니다.지난 수십 년 동안 뱀, 지렁이, 곤충, 식물, 버섯, 미생물 및 발효 식품과 같은 천연 자원의 많은 섬유소 분해 효소, 청국장, Tempeh 등이 확인되고 연구되었다. 이러한 효소가 다양한 출처에서 특성화되었지만 미생물 섬유소 분해 효소는 향상된 특이성, 낮은 생산 비용, 비교적 높은 수율 및 재조합 DNA 기술 및 단백질 공학적 접근법에 의해 유전적으로 변형될 가능성이 있습니다. 해양 생태계는 중요한 치료 대사 산물, 특히 효소를 생산하는 미생물의 저장소 역할을 하지만현재까지 대부분 미개척 상태로 남아 있습니다. 해양 환경의 광범위한 생물 다양성으로 인해 해양 미생물은 약리학적 특성을 개선하고 부작용을 줄일 수 있는 생명공학 개발을 위한 다양한 효소를 제공할 수 있습니다. 이러한 효소의 독성을 평가하기 위해 다른 많은 연구 연구가 수행되어야 하지만, 인간에게 적용했을 때 최소한의 부작용이 있다는 증거가 있습니다. 이러한 관점에서 미생물 섬유소용해 효소의 가능한 알레르기 특성에 특별한 주의를 기울여야 합니다. 따라서 해양 공급원의 섬유소 분해 효소는 이 수십 년 동안 임상적 관심을 모았습니다.

2. 섬유소 용해 효소 공급원으로서의 해양 미생물

해양 미생물은 섬유소 분해 효소의 중요한 자원입니다. 이러한 효소는 건강 증진 및 기능 식품 사용에 잠재적인 효능을 가지고 있으며, 이를 적용하면 심혈관 질환을 효과적으로 예방할 수 있습니다. 바실러스속으로 분류되는 해양미생물은 혈전용해효소 생산에 가장 귀중한 자원으로 여겨지는 반면, 해양진균 유래의 혈전용해능을 평가한 연구는 전무합니다. 효소. 섬유소 분해 효소의 촉매 활성은 화학적 변형 및 돌연변이 선택에 의해 향상될 수 있다는 점에 유의해야 합니다.

3. 섬유소용해 효소의 정제

효소 정제의 주요 목적은 다른 오염 단백질과 다른 방해 생체 분자를 제거하는 것입니다. 또한 효소 정제를 통해 정제된 효소의 구조적 및 기능적 특징에 대한 통찰력을 얻을 수 있을 뿐만 아니라 응용 분야를 예측할 수 있습니다. 필요한 순도 수준은 단백질이 사용되는 목적에 따라 다릅니다. 치료 용도로 간주되는 경우 효소는 더 높은 수준의 순도를 가져야 하며 여러 후속 정제 단계를 거쳐 처리되어야 합니다.
현재 해양 미생물에서 섬유소 분해 효소를 분리하고 정제하기 위해 여러 가지 접근 방식이 사용되었습니다. 이러한 접근법은 첫 번째 단계로 수성 완충액으로 박테리아를 추출한 다음 아세톤 또는 황산암모늄을 사용한 농축/침전 단계와 투석을 포함했습니다. 황산암모늄은 저가의 시약이고 물에 잘 녹으며 단백질과 효소를 안정화시킬 수 있기 때문에 단백질 침전에 황산암모늄을 사용하는 것이 바람직합니다. 다른 크로마토그래피 단계를 사용하여 추가 정제를 수행합니다.

4. 해양미생물 섬유소분해효소의 생화학적 특성 규명

4.1. 혈전용해효소의 물리화학적 성질

4.1.1. pH, 온도, 억제제 및 이온의 분자량 및 영향

분자량, 최적 pH 및 온도를 포함하여 해양 미생물 섬유소 분해 효소의 중요한 물리화학적 특성에 대한 자세한 개요를 제공합니다. 정제된 해양 미생물 섬유소분해 효소의 분자량은 방선균(Streptomyces lucitanus)의 낮은 21kDa에서 시아노박테리움(Arthrospira platensis)의 높은 72kDa까지 다양합니다. 대부분의 해양 미생물 섬유소분해 효소는 중성에서 알칼리성 값으로 변동하는 최적의 pH를 가지며, 범위는 6에서 8까지입니다. 해양 미생물 섬유소 분해 효소의 최적 온도 범위는 33°C(Streptomyces radiopugnans VITSD8) ~ 60°C(Bacillus flexus)입니다. 또한, 일부 연구는 화학 시약 및 금속 이온이 이러한 새로운 섬유소 분해 효소에 의한 촉매 작용을 묘사하고 특성화하는 효과에 초점을 맞췄습니다. 실제로, 활성 부위의 특정 화학적 기능에 따라 섬유소분해 효소는 메탈로프로테아제, 세린 프로테아제 및 세린 메탈로프로테아제로 분류될 수 있습니다. 대부분의 Bacillus spp. serine protease에 속하며 PMSF(Phenyl Methyl Sulphonyl Fluoride)에 의해 활성이 억제된다. 촉매 부위의 세린 아미노산에서 활성 그룹(OH)을 갖는 단백질 분해 효소는 세린 프로테아제로 인식됩니다. 촉매 활성이 억제되는 동안 PMSF의 설포닐 그룹은 활성 부위의 세린 OH 그룹에 비가역적으로 결합합니다. 또한 Pseudomonas aeruginosa KU1의 메탈로프로테아제는 일부 금속 이온, 예를 들어 Mn2+, Fe2+ 및 Zn2+에 의해 억제됩니다. 유사하게, 세린 메탈로프로테아제에 속하는 섬유소용해 효소의 활성은 Serratia marcescens subsp. sakuensi, Arthrospira platensis 및 Chlorella vulgaris의 효소에 대한 Fe2+; 따라서 이들의 촉매는 EDTA(에틸렌디아민테트라아세트산) 및 EGTA(에틸렌 글리콜-비스(β-아미노에틸 에테르)-N,N,N',N'-테트라아세트산)와 같은 킬레이트제에 의해 억제되었습니다.

4.1.2. 피브리노겐 용해 활동 섬유소 용해 효소의 효능은 플라스미노겐을 간접적으로 활성화하는 것과 섬유소에 직접적으로 작용하는 두 가지 다른 메커니즘에 의해 결정됩니다. 해양 바실러스 효소는 일반적으로 섬유소 형성 또는 섬유소 분해 생성물에 직접적으로 작용한다. Bacillus velezensis BS2에서 분리된 AprEBS2는 높은 Aα 섬유소 용해 활성을 나타냈고, 중간 정도의 Bβ 및 약한 γ 사슬 섬유소 용해가 나타났습니다. 그럼에도 불구하고 Bacillus pumilus BS15와 Bacillus subtilis JS2의 섬유소 분해 효소는 γ-사슬 용해를 나타내지 않았습니다. Bacillus licheniformis KJ-31은 Aα fibrinogen lytic 활성이 높은 fibrinolytic enzyme만을 생산하는 미생물 중 하나입니다.

4.2. 해양 미생물 섬유소 분해 효소의 아미드 분해 및 동역학 특성

미생물 섬유소분해 효소는 아미드분해(또는 전응고제) 활성을 나타내며, 이는 다양한 합성 발색 기질을 사용하여 평가됩니다. 연구된 효소의 대부분은 N-Succ-Ala-Ala-Pro-Phe-pNA에 대해 높은 특이성을 보여 세린 프로테아제로 분류합니다. 또한 미카엘리스 상수, 반응 속도(Vmax) 및 회전율(kcat)을 포함한 운동 매개변수는 특정 기질에 대한 효소의 특이성과 친화성을 이해하는 데 도움이 됩니다.

5. 해양미생물 섬유소분해효소 생산

5.1. 유전자 조작 균주의 구축

유전자 클로닝, 돌연변이 유발 및 재조합 DNA 기술은 박테리아 숙주에서 섬유소 분해 효소의 과발현과 촉매 특성을 조작하기 위해 사용되었습니다. 예를 들어, Yao와 동료들(2018)은 Bacillus pumilus BS15에서 재조합 섬유소분해 효소의 상당히 높은 섬유소분해 활성을 달성했습니다. 또 다른 예에서 Che와 동료(2020)는 유전자 투여량, 코돈 최적화 및 공정 최적화를 사용하여 해양 Bacillus subtilis에서 분리한 섬유소 용해 효소(fibase)의 높은 발현 및 분비를 달성했습니다. 따라서 배양 배지 최적화와 재조합 DNA 기술의 조합이 효소 역가를 증가시키기 위해 효과적으로 사용되었습니다.

5.2. 발효 접근법

효소의 생산 비용은 산업 분야에서 도전적인 요소 중 하나입니다. 미생물 섬유소용해 효소의 상업적 획득 가능성은 가능한 최저 비용으로 높은 수율을 필요로 합니다. 따라서 발효 접근법은 효소 생산 비용을 줄이는 데 매우 뛰어납니다. 예를 들어, 선택된 침지 발효는 생산 수율과 효율성을 향상시킬 수 있습니다. 유사하게 Anusree와 동료(2020)는 수중 발효를 사용하여 해양 환경에서 얻은 세균 Serratia rubidaea KUAS001에서 섬유소 용해 효소의 발현을 개선할 수 있었습니다. 또한 Pan과 동료들(2019)은 Bacillus subtilis D21-8에서 효소의 생산 비용을 최소화하기 위해 비멸균 침지 발효의 활용을 보여주었습니다. 또한 Box–Behnken 설계, 2단계 완전 요인 설계, 반응 표면 방법론, Plackett-Burman 설계, 1인자 실험, L18-직교 배열 방법 및 중앙 복합 실험 설계는 물리-화학적 최적화에 유용한 접근 방식입니다. 섬유소 분해 효소 생산을 위한 매개변수. 예를 들어 Farraj와 동료(2020)는 2단계 완전 요인 설계 및 반응 표면 방법론을 적용하여 고체 발효 공정을 사용하여 Bacillus flexus에서 분리된 섬유소 분해 효소의 발현을 증가시킬 수 있었습니다. 그들은 최대 3.5배까지 향상된 섬유소 분해 효소 생산을 입증했습니다

6. 해양미생물 섬유소용해효소의 혈전용해 활성

CVD의 효과적인 치료는 미생물 섬유소용해 효소와 같은 혈전 용해제에 의존합니다. 미생물은 고대부터 섬유소 분해 효소를 생산하는 데 활용되었습니다. 지난 수십 년 동안 연구원들은 해양 미생물에서 섬유소 분해 효소 생산에 대해 집중적으로 보고했습니다. 예를 들어, Hwang et al. (2007)은 BpKJ-31이 출혈을 유발하지 않는 건강 증진 생체 재료로서 유망한 후보임을 보여주었다. 해양 Serratia marcescens의 정제된 섬유소 용해 효소에 의한 혈전 용해에 대한 시험관 내 연구 결과 38%의 혈전 용해가 나타났으며 이는 streptokinase 및 heparin에 의해 보고된 것보다 훨씬 높았습니다. 또한 Gowthami 등이 수행한 연구(2021)에서 박테리아 균주 GPJ3에서 분리한 섬유소 용해 효소는 시험관 내 조건에서 완전히 혈전을 분해하고 대식세포의 상처 치유에 강력한 활성을 나타냈습니다. 해양 Bacillus subtilis의 재조합 fibase의 특성은 혈전증의 치료 및/또는 예방을 위한 잠재적인 사용을 제안합니다. 또한 Pseudomonas aeruginosa KU1의 새로운 섬유소용해 프로테아제인 정제된 PEKU1은 CVD 치료제로 개발될 수 있는 뛰어난 잠재력을 가지고 있습니다.

7. 결론

과학계는 이미 혈전용해 효소에 대한 모든 이용 가능한 정보를 효과적으로 활용하고 있습니다. 미래 전망으로서 커뮤니티는 특히 해양 환경에서 섬유소 분해 효소의 새로운 공급원을 탐색하는 데 초점을 맞춰야 합니다. 해양 미생물 섬유소 용해 효소는 CVD를 예방하거나 치료하기 위한 표적 약물로서 엄청난 치료 잠재력을 가지고 있습니다. 이러한 효소에 대한 광범위한 연구는 심장 질환 관리를 위한 비용 효과적이고 안전하며 예방적인 솔루션을 개발할 것을 약속합니다. 혈전용해제를 개발하고 개선하는 새로운 추세는 피브린 특이성과 결합 효능을 강화하는 것입니다. 경제적이고 효과적이며 안전한 약물을 설계하려면 생산 매개변수의 추가 최적화도 필요합니다. 따라서 혈전용해제로 해양 미생물 섬유소용해 효소를 사용하는 것은 미래에 상서롭고 안전한 선택이 될 수 있습니다.

 

 

 

혐기성 박테리아에 의한 셀룰로오스 분해의 필수 단계는 박테리아가 다당류에 부착되는 것입니다. 많은 혐기성 박테리아에서 부착 단백질과 광범위한 다당류 가수분해에 필요한 효소는 셀룰로솜이라는 복잡하고 흥미로운 구조로 구성됩니다. 그람 양성 혐기성 Ruminococcus albus는 또한 셀룰로솜 유사 복합체를 생성합니다. 그러나 박테리아는 식물 표면에 부착하기 위한 다른 메커니즘(들)을 가지고 있는 것으로 보이며 셀룰로오스에서의 성장과 관련된 기능을 암호화하는 유전자는 기능적 프로테오믹스, 차동 디스플레이 역전사 효소 PCR 및 돌연변이 분석의 조합에 의해 제안된 바와 같이 조건부로 발현됩니다. 셀룰로오스 결합 단백질의 새로운 형태가 확인되었으며 그람 음성 병원성 박테리아의 유형 4 섬유 단백질과 가장 유사한 Pil 단백질 계열에 속하는 것으로 나타났습니다. 이러한 연구는 식물 표면에 대한 박테리아의 접착에 대한 새로운 통찰력을 제공했으며 병원성 및 비병원성 박테리아 모두에서 유전적으로 유사한 접착 결정 요인의 존재 가능성에 주의를 환기시켰습니다.

 

다양한 다당류를 가수분해할 수 있는 그람 양성 혐기성 구균입니다. 16S 리보솜 DNA 서열 비교에 의한 계통발생학적 분석은 현재 이 속에 분류된 모든 종이 그람 양성 박테리아의 Bacillus/Clostridium subphylum에 속하지만 두 개의 뚜렷한 클러스터가 있음을 보여줍니다. 하나의 클러스터에는 반추위 분리주 R. flavefaciens, R. albus 및 결장 분리주 R. bromii 및 R. callidus가 포함됩니다. 두 번째 군집에는 R. gnavus, R. lactaris, R. obeum, R. productus 및 R. torques가 포함됩니다. 우리는 몇 가지 이유로 R. albus에 의한 셀룰로오스 가수분해의 분자적 측면을 정의하는 데 특히 관심이 있습니다. 이 박테리아는 R에서 셀룰로오스 가수분해 효소의 생성 및 조직화 때문에 검사 ​​중인 다른 셀룰로오스 분해 미생물에 비해 독특합니다. albus는 페닐아세트산(PAA) 및 페닐프로피온산(PPA) 제공을 조건으로 합니다. 보다 실용적인 관점에서 R. albus는 초식동물에서 우세한 3종의 셀룰로오스 분해 박테리아 중 하나입니다. 초식 동물에 의한 셀룰로오스 사료의 활용이 최적화되려면 R. albus에 의한 유전자 발현 및 다당류 가수분해에 영향을 미치는 물리적 및 생화학적 신호를 이해해야 합니다. 현재 R. albus 또는 기타 셀룰로오스 분해성 혐기성 미생물과 함께 사용할 수 있는 유전자 전달 시스템이 없으므로 트랜스포존 돌연변이 유발 및 유전자 변위와 같은 강력한 기술은 현재 이러한 박테리아를 연구하는 접근 방식의 레퍼토리에서 배제됩니다. 그러나 proteomics와 Differential display reverse-transcriptase polymerase chain reaction(DD RT-PCR)을 조합하여 사용함으로써, 우리는 이 박테리아에 의한 셀룰로오스 분해에 영향을 미치는 것으로 알려진 생화학적 단서에 대한 R. albus의 반응에 대한 새로운 통찰력을 얻었습니다. 우리는 또한 R. albus가 Pil-단백질 계열, 특히 유형 4 섬유소와 유 전적으로 및 구조적으로 유사한 셀룰로오스 접착 단백질(들)을 생산한다는 증거를 얻었습니다. 병원성 박테리아의 단백질. 2 셀룰로좀 패러다임 셀룰로좀은 크고 안정적이며 셀룰로오즈에 대한 접착 및 분해에 특화된 다중 효소 복합체입니다.

 

Bayer, Lamed 및 동료들은 수년 전에 유전적으로 다양한 범위의 혐기성 박테리아에서 '셀룰로오스'의 존재를 확립하기 위해 전자현미경, 생화학 및 면역화학적 방법을 사용했습니다. 셀룰로솜은 주로 세포 표면에서 볼 수 있는 돌출부 내에 존재하지만, 복합체는 배양 배지에서도 검색할 수 있습니다. 셀룰로좀에 대한 우리의 많은 지식은 클로스트리디움 spp.의 연구에서 파생되었으며, 클로스트리디움 써모셀룸 셀룰로좀의 모델은 그림 1에 재현되어 있습니다. 그것은 효소 부착(유형 I 코헤신 도메인을 통해), 셀룰로스 결합(CBD) 또는 C. thermocellum 스캐폴딘의 경우 박테리아 세포에 고정하는 것으로 나타난 일련의 기능적 도메인을 소유하는 큰 글리코실화된 단백질입니다. 표면(유형 II 도커린 도메인을 통해). 셀룰로오스의 촉매 성분에는 셀룰로오스 및 기타 식물 다당류의 가수분해와 관련된 효소가 포함됩니다. 이 단백질은 또한 다당류 결합의 절단, 셀룰로오스 결합 또는 효소 진행성, 스캐폴딘에 대한 부착(유형 I 도커린-유형 I 코헤신 상호 작용을 통해)을 조정하는 개별 도메인을 포함하는 모듈식 구조를 특징으로 합니다. 두 Clostridial 종에 대한 최근 연구는 촉매 단백질의 I형 도커린이 스캐폴딘의 I형 코헤신과 선택적으로 그리고 종 특이적 방식으로 상호작용한다는 것을 보여주었습니다. 박테리아 표면에 대한 C. thermocellum 셀룰로솜의 고정은 또한 cohesin-dockerin 유형의 상호 작용에 의해 매개되는 것으로 보입니다. C의 유형 II 도커린. thermocellum scaffoldin은 sdbA 유전자에 의해 암호화된 표면 단백질에 존재하는 type II cohesin 도메인과 안정적인 상호작용을 형성합니다(scaffoldin dockerin binding). 또한 SdbA 단백질은 다른 박테리아 표면층 단백질에서 발견되는 것과 유사한 반복 도메인을 가지고 있어 박테리아의 S-층으로의 통합을 시사합니다. 유형 I 또는 유형 II 코헤신을 각각 소유하는 몇 가지 다른 '외층 단백질'(OlpA, OlpB)도 확인되었으며, 세포 표면에 고정되는 효소와 스캐폴딘이 여러 메커니즘에 의해 조정될 수 있음을 시사합니다.

 

1 Clostridium thermocellum cellulosome의 개략도 모델. 새 탭에서 열기슬라이드 다운로드 클로스트리디움 써모셀룸 셀룰로좀의 개략도 모델. '셀룰라아제' 효소 구조와 기능에 대한 우리의 지식은 매우 빠르게 발전했으며 다양한 스캐폴딘의 구조와 기능을 설명하는 분자 세부 사항도 이제 나타나기 시작했습니다. 여러 박테리아에서 셀룰로좀을 발견하고 특성을 규명한 결과 많은 혐기성 셀룰로 분해 박테리아가 식물 표면에 단단히 부착되는 이유와 그들의 '셀룰라아제' 활동이 주로 박테리아 세포 표면에 위치하는 이유를 설명하는 데 도움이 되었습니다. 그러나 여전히 답이 없는 질문이 많이 있습니다. 셀룰로좀 조립(및 단백질 글리코실화)은 어디에서 어떻게 진행됩니까? 셀룰로좀은 다른 혐기성 세균의 세균 세포벽에 어떻게 고정되어 있습니까? 현재까지 C. thermocellum에서 파생된 지식에도 불구하고, 유사한 앵커링 메커니즘을 지원하는 다른 셀룰로솜 생성 박테리아에 대한 분자적 또는 생화학적 증거가 거의 없는 것으로 보입니다. 셀룰로솜에 대한 추가 연구는 진정세균에 의한 초분자 구조의 형성에 대한 우리의 근본적인 이해를 향상시키고 아마도 고분자 기질을 귀중한 최종 생성물로 전환시키는 새로운 방법을 제공할 것입니다.

 

R. albus의 셀룰로좀 패러다임과 셀룰라아제 조직 사이의 유사점과 대조 셀룰로좀 개념을 확립하는 기초 출판물 이후, 일화 및 생화학적 증거는 R. albus에서 셀룰로좀 생산을 뒷받침했습니다. Woodet al. 은 R. albus 균주 SY3의 셀룰라아제 활성이 고분자량(~1.5 MDa, 셀룰로좀과 유사)이었다고 보고했습니다. 저분자량의 단백질로 '해리제'에 의해 파괴될 수 있습니다. 전자현미경과 면역조직화학적 방법의 조합은 또한 R. albus에 의한 셀룰로솜 유사 소기관 생산을 위한 지원을 제공했습니다. 그러나, 다른 셀룰로오스 분해성 혐기성 박테리아와 달리, 고분자량 셀룰라아제 복합체의 생산과 셀룰로오스에 의한 R. albus의 효과적인 분해 및 성장은 성장 배지에서 정화된 반추위액의 제공에 의존했습니다. Leatherwood 에 의해 초기에 설명된 이 '반추위 유체 효과'는 Stack, Hungate 및 동료에 의해 설명되었습니다. 반추위액의 활성 성분은 PAA와 PPA인 것으로 나타났다. 마이크로몰량의 이러한 화합물은 반추위액을 대체할 수 있고 고분자량 셀룰라아제 활성의 생성을 자극할 수 있습니다 및 셀룰로오스 소화 동역학. R. albus의 세포 형태는 또한 PAA와 PPA의 마이크로몰 농도에 따라 변화하는 것으로 나타났습니다. 세포 표면에 셀룰로솜과 같은 돌출부가 존재하는 것 외에도 PAA/PPA를 제공하면 소포 및 섬유질과 같은 구조가 생성됩니다. 성장 배지에서 PAA/PPA를 생략하면 이러한 구조와 셀룰라아제 활성이 사실상 세포외이고 저분자량의 소멸을 초래했습니다. 가장 최근에 Miron et al. 는 셀룰로오스에 부착하는 능력을 완전히 상실한 R. albus SY3의 돌연변이 균주를 설명했습니다. 돌연변이체의 셀룰로오스 분해 활성도 소실되었고, 돌연변이체 균주의 전자현미경 검사는 셀룰로좀 유사 돌출부가 없는 것으로 나타났다.

 

PAA/PPA 또는 첨가물이 없는 셀로비오스 배지에서 성장한 R. albus 8의 투과 전자 현미경 사진. 셀룰로솜 유사 복합체의 발현을 수반하는 구형(S) 및 소포형(V) 유사 구조가 표지됩니다. 이러한 발견이 R. albus에 의한 셀룰로솜의 생산을 뒷받침하지만, 그러한 복합체에 대한 유전적 증거는 R. albus 및 R. flavefaciens의 셀룰라아제 및 자일라나아제 유전자에서 유형 I 도커린이 발견된 최근에야 얻어졌습니다. 우리 연구실은 또한 먼저 셀룰로오스에 대한 접착력이 부족한 돌연변이를 분리하고 후보 접착 단백질을 암호화하는 것으로 여겨지는 클론을 얻기 위해 역유전학을 사용하여 셀룰로좀의 존재에 대한 유전적 증거를 얻었습니다. R. albus 균주 8의 4가지 돌연변이가 현재까지 조사되었으며 이들은 모두 셀룰로오스에 대한 부착에 있어 완전한 결함이 아니라 부분적으로 결함이 있습니다. 돌연변이 중 하나는 성장 배지의 점도를 크게 증가시키는 다량의 세포외 물질을 생성합니다. 이 돌연변이는 세포외 다당류를 과잉 생산하는 것으로 나타난 R. albus 균주 20의 최근 분리된 접착 결함 돌연변이와 유사할 가능성이 높습니다. 3개의 다른 R. albus 8 돌연변이 균주의 단일 차원 SDS-PAGE 단백질 프로필은 ~115-kDa(CbpD) 및 ~95-kDa(CbpE) 폴리펩티드의 손실을 나타냈습니다. cpbD 프로브에 혼성화된 몇 가지 독립적인 클론이 이제 분리되어 부분적으로 시퀀싱되었습니다. 다양한 Clostridial endoglucanases 및 xylanase의 유형 I 도커린과 매우 유사한 서열뿐만 아니라 최근 Karita et al., 이 클론에서 확인되었습니다.

 

C. thermocellum CelA 단백질에 존재하는 반복된 dockerin 서열과 이론적인 R. albus 유형 I dockerin 서열의 정렬.

 

3개 서열 모두에서 동일한 아미노산은 별표로 표시되는 반면, R. albus CbpD 서열 및 다른 것 중 하나에 존재하는 동일한 아미노산은 캐럿으로 표시된다. CelA 및 EgvVI 반복 시퀀스는 모두 C-말단에서 발생합니다. 새 탭에서 열기슬라이드 다운로드 이론적인 R. albus I형 도커린 서열과 C. thermocellum CelA 단백질에 존재하는 반복 도커린 서열의 정렬. 3개 서열 모두에서 동일한 아미노산은 별표로 표시되는 반면, R. albus CbpD 서열 및 다른 것 중 하나에 존재하는 동일한 아미노산은 캐럿으로 표시된다. CelA 및 EgvVI 반복 시퀀스는 모두 C-말단에서 발생합니다. 우리가 분리한 돌연변이는 연구 가능한 첫 번째 유형입니다. 이러한 돌연변이에 대한 우리의 예비 특성화는 R. albus에 의한 셀룰로솜 유사 소기관의 생산을 확인했지만, 그 발견은 또한 새로운 질문을 제기합니다.

 

셀룰로오스에 대한 R. albus의 접착과 관련된 Pil-단백질 복합체의 생산을 뒷받침하는 증거 R. albus의 현미경 검사에서 셀룰로오스에 대한 접착을 매개하는 것으로 보이는 셀룰로솜 유사 돌기 이외의 구조가 밝혀졌습니다. Pattersonet al. 은 세포 표면에서 600nm만큼 튀어나온 '광범위한 양의 원섬유, 세포외 물질'의 존재를 설명했습니다. 셀룰로오스에 대한 접착력을 주로 담당하는 것으로 여겨졌습니다. 스택 외. 는 나중에 R. albus에 PAA/PPA가 제공되었을 때 'fimbrial-like structure'의 존재를 설명했으며 우리는 성장 배지에 PAA/PPA를 포함함으로써 셀룰로오스에 대한 R. albus 접착력이 증가한다는 것을 보여주었습니다. R. albus 균주 F-40의 전자현미경 검사에서도 셀룰로스에 대한 접착력을 매개하는 유사한 구조가 나타났습니다. 이러한 배경과 이전에 클로닝된 R. albus 유전자가 확인된 셀룰로오스 결합 도메인을 인코딩하지 않는다는 사실을 고려하여 우리는 셀룰로오스 결합 단백질(들)을 식별하고 분리하기 위해 기능적 프로테오믹스 접근 방식을 취하기로 결정했습니다. 상대적으로 작은 분자량(16-25kDa)의 여러 단백질이 확인되었으며 이러한 단백질 중 하나에 대한 초기 특성화를 완료했습니다. 이하 셀룰로스 결합 단백질 유형 C(CbpC)라고 합니다. cbpC 유전자는 역 유전학 및 게놈 보행 절차의 조합에 의해 분리되었으며 계산된 분자량이 17,655 Da인 169개 아미노산의 단백질을 암호화하는 것으로 나타났습니다. CbpC 단백질은 기존의 CBD 계열과 서열 유사성이 없지만 비교적 잘 특성화된 다른 단백질의 특징적인 모티프가 존재합니다. 특히, CbpC 단백질의 아미노-말단 3번째는 Pil 계열 단백질, 특히 Dichelobacter nodosus, Moraxella bovis, Neisseria gonorrhoeae 및 Pseudomonas aeruginosa의 유형 4 fimbrial subunit 단백질의 리더 펩티드, 절단 부위 및 모티프 특징을 가지고 있습니다.

 

핌브리알 소단위체는 상대적으로 저분자량 폴리펩타이드(20-25kDa)이며 생성된 핌브리아는 박테리아 세포의 극성 말단에 위치합니다. 4형 핌브리아 서브유닛 단백질의 카르복시 말단 2/3는 일련의 짧고 상당히 소수성인 도메인으로 구성되어 있으며, 이 도메인은 β-시트 구조를 형성할 가능성이 있으며, 그 주위에 면역 반응성을 결정하는 친수성 서열이 배열되어 있습니다. 세포 표면에 대한 결합 측면에서 특이성을 부여하는 것도 단백질의 이 영역입니다. CbpC 단백질의 Kyte-Doolittle 플롯과 열거된 병원체의 핌브리아 소단위 단백질은 매우 유사합니다. CbpC와 fimbrial 단백질은 모두 카르복시 말단에 비교적 긴 친수성 잔기를 가지고 있지만 Pil 계열의 다른 구성원은 그렇지 않습니다. CbpC와 유형 4 fimbrial 단백질 사이의 유사성은 셀룰로오스에 대한 CbpC 결합이 단백질의 2/3의 카르복시를 통해 매개될 가능성이 가장 높다는 것을 시사합니다. Rickettsia spp.의 190-kDa 표면 항원 단백질 내에서 직렬로 13번 반복되는 72- 및 75-아미노산 모티프와 CbpC 단백질의 이 부분 사이에 상당한 서열 동일성이 존재합니다. 이러한 모티프는 Rickettsia spp.의 인식 및 부착에 중요한 역할을 하는 것으로 생각됩니다. 구조와 기능의 이러한 유사성은 식물 표면에 대한 접착에서 CbpC에 대해 제안된 역할에 신뢰성을 더합니다. R. albus 야생형 및 돌연변이 균주에 대한 추가 연구는 접착 과정에서 CbpC의 역할을 추가로 확립했습니다. 성장 배지에 PAA/PPA 둘 다의 반추위액 또는 마이크로몰 농도를 포함시킴으로써 셀룰로오스-결합 검정에서의 albus 접착력 및 cbpC 전사체 풍부도가 상당히 증가하였습니다. 다클론성 항-CbpC 항혈청을 사용한 웨스턴 면역블랏 분석은 앞에서 설명한 4가지 돌연변이 균주 모두와 야생형 균주가 비슷한 양의 CbpC 단백질을 생산한다는 것을 보여줍니다. 이들 돌연변이 균주에 의한 기능성 CbpC-함유 복합체의 생산은 부착의 완전한 결함보다는 부분적인 결함을 설명할 것이다. 용해성 셀룰로오스 유사체 카르복시메틸셀룰로오스(CMC)는 또한 셀룰로오스에 대한 R. albus 접착력을 감소시키며, 최대 억제 효과는 0.1%(w/v)를 초과하는 CMC 농도에서 달성되며 세포 접착력은 약 40%로 감소합니다. CMC의 존재 또는 부재 하에 CbpC 단백질의 제조에 대해 일련의 셀룰로오스-결합 실험이 또한 수행되었습니다. 억제제(CMC, 0.1% w/v) 및 단백질(CbpC)의 농도는 이러한 분석에서 일정하게 유지되었지만 기질(셀룰로오스)의 양은 다양했습니다. 25-100 mg 셀룰로오스를 포함하는 분석 혼합물에서 모든 CbpC 단백질은 CMC의 유무에 관계없이 셀룰로오스에 결합되었습니다. 그러나 적은 양의 셀룰로오스(1.25~12.5mg)에서는 결합된 CbpC의 양이 존재하는 셀룰로오스의 양에 따라 달라지며 CMC가 있는 경우 CbpC 결합이 더 감소했습니다. 이러한 결과는 CMC가 셀룰로오스에 결합하는 CbpC의 결합 상수(Ka)에 영향을 미치지만 최대 결합(Vmax)에는 영향을 미치지 않음을 시사합니다. 따라서 CMC는 셀룰로오스에 결합하는 CbpC의 경쟁적 억제제 역할을 합니다.

 

이러한 결과에 기초하여, 우리는 R. albus 균주 8이 셀룰로오스에 부착하는 두 가지 메커니즘을 가지고 있다고 제안합니다: 셀룰로솜 유사 메커니즘 및 셀룰로오즈와 상호 작용하는 섬유질 유사 구조의 생성을 포함하는 CbpC(Pil)-단백질 메커니즘 셀룰로오스 유사체 CMC에 의해 경쟁적으로 억제될 수 있습니다. 서던 블롯 분석은 다수의 다른 R. albus 균주가 cbpC 유전자 동족체(들)를 보유하고 있음을 확인했습니다. 또한 Western immunoblot 분석에서 R. albus SY3에 존재하는 약 25kDa의 단백질이 항-CbpC 항체와 교차 반응성이 있음을 확인했으며 후속 실험에서 동일한 단백질이 셀룰로오스 결합 단백질인 것으로 나타났습니다. 이러한 발견에 기초하여, CbpC 단백질이 셀룰로스에 대한 그람-양성 박테리아의 부착을 위한 새로 확인된 전략임을 제안하는 것이 타당해 보인다. Ruminococcus 속의 Pil 단백질의 분포와 기능은 추가 조사가 필요하지만 Pil 유사 유전자는 셀룰로오스 분해 종의 진화 역사 초기에 획득된 것으로 보입니다. 5 DD RT-PCR에 의한 PAA/PPA에 대한 조건부 유전자 발현 검사 DD RT-PCR은 PAA/PPA와 같은 생화학적 및/또는 물리적 단서에 대한 R. albus의 반응을 검사하는 새로운 접근법을 제공했습니다. 추정되는 차별적으로 발현된 서열 태그(dEST)를 확인하고 이후 노던 블롯 분석으로 검사했습니다. 결과는 6개의 추정 dEST가 반추위액 및/또는 PAA/PPA에 대한 반응으로 차등적으로 발현되었으며, 이러한 전사체의 대부분은 상대적으로 컸습니다(>4kb). 2개의 dEST(D4 및 D18)를 암호화하는 게놈 DNA 단편이 현재 분리 및 클로닝되었습니다. 이들 클론의 뉴클레오티드 서열 분석은 D4 EST가 5개의 유전자를 포함하는 오페론의 일부이고 모든 유전자가 섬유 다발 형성을 위해 Streptococcus crista에 필요한 오페론에 존재하는 것과 높은 수준의 서열 유사성을 가짐을 보여주었습니다. D18 EST도 4개의 유전자를 포함하는 오페론에서 파생되었습니다. 첫 번째 유전자는 박테리아 조절 단백질의 LacI-GalR 계열과 상당한 서열 유사성을 가진 단백질을 인코딩하고 두 번째 유전자는 그람 양성 박테리아의 여러 탄수화물 결합 수송체 단백질과 유사한 지단백질을 인코딩합니다. 마지막 두 유전자는 Thermoanaerobacter brockii의 cglF 및 cglG 유전자와 매우 유사하며 ABC 수송 시스템의 내부 막 단백질을 암호화하는 것으로 추정됩니다. 이러한 발견은 여러 면에서 중요합니다. 첫째, PAA/PPA가 R. albus의 영양소가 아니라 신호 분자 역할을 한다고 제안하는 것이 타당해 보입니다. 둘째, PAA/PPA에 대한 반응으로 조건부로 발현되는 유전자는 가수분해 효소를 넘어 확장되며 아마도 단백질 수출 및 기질 흡수 모두와 관련된 다중 단백질 복합체를 포함합니다. 이러한 시스템에 대한 지식이 Escherichia coli의 게놈 라이브러리 스크리닝을 통해 도출되었을 가능성은 낮습니다. 원핵생물을 이용한 DD RT-PCR의 유용성은 시퀀싱된 게놈을 통해서만 완전히 실현될 수 있지만 이러한 방법은 여전히 ​​성장 환경에 대한 다른 미생물의 반응에 대한 귀중한 정보를 제공할 수 있습니다.

 

6 결론 순응적인 유전자 전달 시스템이 없음에도 불구하고 R. albus는 기능적 프로테오믹스의 활용, 돌연변이 선택 및 특성화, DD RT-PCR에 의한 조건부 유전자 발현 검사를 통해 획득되었습니다. 지금까지의 연구 결과는 '셀룰로좀'의 존재 외에도 셀룰로오즈에 대한 부착을 매개할 수 있는 다른 구조도 생성된다는 것을 밝혀냈는데, 이는 지금까지 병원성 박테리아에서 가장 잘 기술된 시스템과 유전적으로 구조적으로 유사합니다. 셀룰로오스에 접착하기 위한 이러한 겉보기에 이질적인 시스템이 실제로 R. albus에서 조화롭게 조절되는지 여부를 결정하는 것은 흥미로울 것입니다. 병원성 박테리아가 표면에 부착하는 핌브리아의 역할이 집중적으로 연구되었지만 유사한 구조가 비병원성 미생물에 의해 생성될 수도 있다는 가능성은 덜 주목받은 것 같습니다. 셀룰로좀 패러다임과의 비교 분석 외에도 R. albus의 접착 메커니즘은 '비교 병리학'의 흥미롭고 색다른 버전인 것으로 보입니다. 병원성 박테리아가 사용하는 접착 요소 및 관련 조립 프로세스는 비병원성 박테리아에도 어느 정도 존재하며, 이는 영양분 획득 및 성장을 보장하기 위해 표면에 부착해야 합니다.병원성 박테리아가 사용하는 접착 요소 및 관련 조립 프로세스는 비병원성 박테리아에도 어느 정도 존재하며, 이는 영양분 획득 및 성장을 보장하기 위해 표면에 부착해야 합니다. 병원성 박테리아가 사용하는 접착 요소 및 관련 조립 프로세스는 비병원성 박테리아에도 어느 정도 존재하며, 이는 영양분 획득 및 성장을 보장하기 위해 표면에 부착해야 합니다. 

 

 

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